现代化工

现代化工 ›› 2026, Vol. 46 ›› Issue (6) : 122-129. DOI: 10.16606/j.cnki.issn0253-4320.2026.06.021

科研与开发

pH响应型二硫化钼/葛根素纳米载药体系的制备与性能

魏梅 ¹ ,
赵瑞瑞 ² ,
黄绍德 ¹ ,
李果 ³ ,
覃清霞 ¹ ,
韦思琪 ¹ ,
赵美荣 ¹^,^*

作者信息 +

Preparation and properties of pH responsive molybdenum disulfide/puerarin nanocarrier system

WEI Mei ¹ ,
ZHAO Rui-rui ² ,
HUANG Shao-de ¹ ,
LI Guo ³ ,
QIN Qing-xia ¹ ,
WEI Si-qi ¹ ,
ZHAO Mei-rong ¹^,^*

Author information +

文章历史 +

Received		Published
2025-08-01		2026-06-20
Issue Date	Revised Date
2026-06-16	2025-08-01

PDF (7361K)

摘要

基于纳米二硫化钼（MoS₂）表面缺陷位点对巯基的亲和性，构建了一种具有靶向性、抗耐药性及生物相容性良好的普朗尼克F68（PF68）与精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸三肽（RGD）功能化修饰的二硫化钼/葛根素纳米载药体系PF68-PEI-MoS₂-RGD（MPPR-PUE）。采用傅里叶变换红外光谱（FT-IR）、透射电子显微镜（TEM）和X射线光电子能谱仪（XPS）对合成材料进行表征；以葛根素为模型药物，通过紫外-可见分光光度计探究该载药体系的载药与释药性能，并通过细胞计数试剂盒-8（CCK8）和划痕实验考察纳米载药体系对肝癌细胞增殖和迁移的影响。结果表明，成功制备了MPPR-PUE纳米粒子，其载药量达46.91%±3.27%，包封率达到82.52%±0.82%。在pH为5.50的磷酸缓冲盐（PBS）溶液中，24 h药物的释放率可以达到61.60%±5.01%，具有pH响应性释药特性。MPPR-PUE纳米粒子对肝癌细胞增殖和迁移的抑制效果最好。

Abstract

Based on the affinity of surface defect sites on nano molybdenum disulfide （MoS₂） for thiol groups，a Pluronic F68 （PF68） and Arg-Gly-Asp tripeptide （RGD） functionalized MoS₂/puerarin nano-drug delivery system，termed PF68-PEI-MoS₂-RGD （MPPR-PUE），was designed and constructed.The synthesized materials were characterized using Fourier Transform Infrared Spectroscopy （FT-IR），Transmission Electron Microscopy （TEM），and X-ray Photoelectron Spectroscopy （XPS）.Using puerarin as the model drug，the drug loading and release properties of this delivery system were investigated via ultraviolet-visible spectrophotometry.The effects of the nano-drug delivery system on the proliferation and migration of hepatocellular carcinoma （HCC） cells were evaluated using cell counting kit-8 （CCK-8） and wound healing （scratch） assays.The results demonstrate the successful preparation of MPPR-PUE nanoparticles，achieving a drug loading capacity of 46.91%±3.27% and an encapsulation efficiency of 82.52%±0.82%.In phosphate buffered saline（PBS）at pH 5.50，the cumulative drug release reached 61.60%±5.01% after 24 h，indicating pH-responsive drug release characteristics.The MPPR nanoparticles exhibited the most potent inhibitory effect on the proliferation and migration of hepatocellular carcinoma cells.

Graphical abstract

关键词

二硫化钼 / 葛根素 / 纳米载药体系 / 抗肿瘤

Key words

molybdenum disulfide / puerarin / nanodrug delivery system / anti-tumor

Author summay

魏梅（1992-），女，硕士，讲师，研究方向为药理活性、药物剂型，1227816425@qq.com。

引用本文

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魏梅,赵瑞瑞,黄绍德,李果,覃清霞,韦思琪,赵美荣. pH响应型二硫化钼/葛根素纳米载药体系的制备与性能[J]. 现代化工, 2026, 46(6): 122-129 DOI:10.16606/j.cnki.issn0253-4320.2026.06.021

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中草药活性成分葛根素（PUE），具有保护心脑血管、减轻肝、肾炎症损伤的作用，有抗肿瘤、抗炎等药理活性^[1-3]，可通过调控磷脂酰肌醇3-激酶（PI3K）、蛋白激酶B（AKT）和哺乳动物雷帕霉素靶蛋白（mTOR）等信号通路诱导肿瘤细胞凋亡并抑制肝癌细胞增殖、迁移及转移^[3-6]，但其水溶性差、对肿瘤组织选择性差等限制了其临床应用。

随着纳米技术的发展，二硫化钼（MoS₂）纳米材料因具有由范德华力结合的S-Mo-S三明治夹层状层状结构及大比表面积、高效吸附能力、表面缺陷位点对巯基亲和性等理化特性^[7-9]，且在体内可经氧化、降解等生物化学转化并兼具光热与催化性能，在肿瘤治疗中应用前景广阔，可通过含巯基化合物功能化修饰构建多功能纳米给药平台^[10-11]。普朗尼克F68（PF68）作为聚氧乙烯-聚氧丙烯嵌段共聚物，具低毒、弱免疫原性，可抑制肿瘤细胞表面P-糖蛋白外排功能以逆转多药耐药性（MDR）^[12-14]，Lee等^[15]制备了Pluronic包被的羟丙基-β-环糊精纳米颗粒，增强对MDR肿瘤细胞杀伤效果。精氨酸-甘氨酸-天冬氨酸三肽（RGD）是整合素α_vβ₃的特异性配体，整合素α_vβ₃在肿瘤新生血管内皮细胞及多种肿瘤细胞表面有高表达，而在成熟血管和正常组织中几乎不表达^[16-17]，在肝癌细胞中，发现α_vβ₃的表达显著增高^[18]。Wei等^[19]合成还原响应性与RGD靶向性的纳米氧化石墨烯药物载体（RGPD），通过细胞摄取实验得到RGD肽能特异性识别HepG2细胞。

本研究构建了RGD靶向的多功能MoS₂纳米载药体系（Pluronic-PEI-MoS₂-RGD，MPPR），通过PF68与RGD的协同修饰，赋予载体抗耐药性、肿瘤靶向性及良好生物相容性。以葛根素为模型药物，研究MPPR的载药能力、pH响应释药特性以及对肝癌细胞增殖和迁移的抑制作用，为肝癌等恶性肿瘤的靶向联合治疗提供了新策略。

1 实验材料与方法

1.1 材料与仪器

试剂：四水合七钼酸铵[（NH₄）₆Mo₇O₂₄·4H₂O]、硫脲[CS（NH₂）₂]购于成都科龙化工股份有限公司；普朗尼克F68（PF68）、聚乙烯亚胺（PEI）、1-乙基-（3-二甲基氨基丙基）碳二亚胺盐酸盐（EDC）、N-羟基琥珀酰亚胺（NHS）、乙腈均购于上海阿拉丁生化科技有限公司；N，N-羰基二咪唑（CDI）、硫辛酸（LA）、葛根素（PUE）、精氨酰-甘氨酰-天冬氨酸（RGD）购于上海麦克林生化科技股份有限公司；二甲基亚砜（DMSO）购于成都金山化学试剂有限公司；三乙胺（TEA）购于天津市富宇精细化工有限公司；以上试剂均为分析纯，实验所用水为超纯水。

细胞：人肝星形细胞（LX-2细胞）、HCC-LM3人高转移肝癌细胞（LM3细胞）购买于上海碧云天生物技术股份有限公司。

仪器：FB203C型电子天平（上海佑科仪器仪表有限公司）；08-2G型磁力搅拌器（上海梅颖浦仪器仪表有限公司）；HT-3型恒温磁力加热搅拌器（国华常州仪器制造有限公司）；DGX-9243B-2型恒温电热烘箱（上海福玛实验设备有限公司）；KQ-300VSM型超声波清洗仪（昆山市超声仪器有限公司）；PHS-25型酸度计（上海仪电科学仪器股份有限公司）；TGL-21M型台式大容量高速冷冻离心机（上海卢湘仪离心机仪器有限公司）；1550型全波长酶标仪（赛默飞世尔科技有限公司）；FTIR-850傅里叶变换红外光谱仪（天津港东科技股份有限公司）；JSM-7610F Plus扫描电镜、JEM-2100型透射电子显微镜（日本电子株式会社公司）；ESCALAB 250Xi型X射线光电子能谱仪（美国赛默飞世尔科技有限公司）。

1.2 实验方法

反应的合成步骤如图1所示。

1.2.1 纳米二硫化钼的制备

以四水合七钼酸铵[（NH₄）₆Mo₇O₂₄·4H₂O]为钼源，以硫脲[CS（NH₂）₂]为硫源，使用水热反应法制备二硫化钼纳米片^[20]。

将1.279 g （NH₄）₆Mo₇O₂₄·4H₂O与2.352 g CS（NH₂）₂溶于35 mL去离子水，超声30 min至完全溶解。取30 mL溶液转移至50 mL不锈钢水热高压反应釜，200℃反应10 h后自然冷却。产物经去离子水冲洗、超声分散，12 500 r/min离心30 min弃上清；将沉淀重复超声分散、离心洗涤3次后，以 4 000 r/min低速离心30 min去除大颗粒，所得MoS₂纳米片悬液密封保存于4℃冰箱备用。

1.2.2 功能化二硫化钼药物载体的制备

基于二硫化钼（MoS₂）对巯基的高活性，对其进行功能化修饰：首先以N，N-羰基二咪唑（CDI）活化普朗尼克F68（PF68）羟基，通过咪唑中间体，使聚乙烯亚胺（PEI）上的氨基和PF68以酰胺键连接，制得PF68-PEI^[21]；随后利用硫辛酸（LA）羧基与PF68-PEI氨基偶联，获得PF68-PEI-LA；进而将其与MoS₂共价结合，最后与硫辛酸活化的精氨酰-甘氨酰-天冬氨酸（RGD-LA）反应，完成MoS₂功能化修饰。

硫辛酸（LA）活化：将115 mg EDC、70 mg NHS和5 mg LA溶于2 mL乙腈，超声活化15 min备用。

PF68-PEI-LA制备：分别将12.7 g PF68和0.25 g CDI溶解于20 mL DMSO，混合后加入 0.2 mL三乙胺，避光搅拌4 h制得PF68-CDI；将其滴加至0.9 g PEI（1.5 mmol）溶液中，2 h滴毕后继续反应12 h，经透析袋（3 500 Da）透析48 h得PF68-PEI；加入活化LA搅拌反应24 h，再次透析48 h获得PF68-PEI-LA。

MoS₂功能化：将25 mL MoS₂纳米片悬液（0.2 mg/mL）与PF68-PEI-LA混合，超声30 min后搅拌24 h，12 500 r/min离心弃上清，去离子水洗涤3次，制得PF68-PEI-MoS₂（MPP）。

MPPR载药体系构建：将RGD溶于30 mL去离子水，超声溶解后调pH至7.4，加入活化LA溶液反应24 h，再与MPP混合继续反应24 h；经12 500 r/min离心、洗涤3次后，4 000 r/min离心弃下清液，即得PF68-PEI-MoS₂-RGD（MPPR）。

1.2.3 样品的表征

采用扫描电子显微镜（SEM）和透射电子显微镜（TEM）观察MoS₂、MPP、MPPR的微观结构及形貌，SEM加速电压为10 kV，TEM加速电压为 200 kV。利用傅里叶变换红外光谱仪（FT-IR）表征样品官能团结构，以KBr为压片基质，将1 mg冷冻干燥后的MoS₂、MPP、MPPR分别与100 mg KBr粉末在玛瑙研钵中充分研磨，压片后置于样品室，扫描范围设为400~4 000 cm^-1，扫描次数20次，分辨率 4 cm^-1。通过X射线光电子能谱仪（XPS）对二硫化钼纳米载体进行元素组成分析，采用Al Kα射线源，以C 1s（284.8 eV）为结合能校正标准，进行全谱扫描及高分辨窄谱扫描，分析元素种类及相对含量。

1.2.4 载药与释药性能测试

（1）葛根素标准曲线：称取10 mg葛根素（PUE）溶于10 mL DMSO，超声溶解后配制成1 mg/mL储备液。取1 mL储备液稀释，通过紫外-可见分光光度计全波长扫描确定特征吸收峰。将储备液稀释为10、20、40、60、80 μg/mL标准溶液，测定特征吸收峰下的吸光度，以浓度为横坐标、吸光值为纵坐标绘制标准曲线。

（2）葛根素负载：利用PF68-PEI-MoS₂-RGD（MPPR）表面氨基与葛根素羟基的共价结合实现载药。取6份1 mL MPPR溶液（2.67 mg/mL），加入10 mL纯化水、12 mg EDC和12 mg NHS，超声活化15 min；分别与1~6 mg葛根素混合，于37℃下振荡反应24 h。反应液经12 500 r/min离心50 min，取上清液，采用紫外分光光度法测定游离葛根素含量，计算载药量[式（1）]和包封率[式（2）]。

（1）$\mathrm{载}\mathrm{药}\mathrm{量}（\mathrm{\%}）={（{\mathrm{M}}_{\mathrm{投}\mathrm{入}}-{\mathrm{M}}_{\mathrm{游}\mathrm{离}}）/[{\mathrm{M}}_{\mathrm{M}\mathrm{P}\mathrm{P}\mathrm{R}}+（{\mathrm{M}}_{\mathrm{投}\mathrm{入}}-{\mathrm{M}}_{\mathrm{游}\mathrm{离}}）]}\times 100\mathrm{\%}$

（2）$\mathrm{包}\mathrm{封}\mathrm{率}（\mathrm{\%}）=[（{\mathrm{M}}_{\mathrm{投}\mathrm{入}}-{\mathrm{M}}_{\mathrm{游}\mathrm{离}}）/{\mathrm{M}}_{\mathrm{投}\mathrm{入}}]\times 100\mathrm{\%}$

式中，M_投入为葛根素药物投入的初始质量，mg；M_游离为上清液中游离葛根素的量，mg；M_MPPR为载体的质量，mg。

（3）释药测试：肿瘤组织和细胞的代谢获能途径与正常细胞不同，肿瘤细胞内的pH值偏弱酸性，有文献报道，肝癌细胞内pH大约是4.0~6.0之间^[22]。基于肝癌细胞内弱酸性环境，参照2020版《中国药典》配制pH为5.50和7.40的PBS缓冲液。取45 mL缓冲液于250 mL烧杯，将5 mL MPPR-PUE溶液装入3 500 Da透析袋（n=3）中，37℃恒温磁力搅拌。间隔取样5 mL透析外液并补充等体积缓冲液，通过紫外分光光度法测定葛根素含量，计算累积释药率Q[式（3）]。

（3）$Q=（V\sum _{n-1}^{t-1}{C}_{t}+{V}_{0}{C}_{t}）/{m}_{drug}$

式中，Q为PUE药物的累积释放量，%；t为不同时刻，h；V₀为释放介质的总体积，mL；C_t为不同时刻测得的药物质量浓度，μg/mL；V为每次取样体积，mL；m_drug为投入药物总质量，μg。

为了进一步探究载药体系的释药行为，通过Origin软件分别采用5种经典数学模型对释药数据进行拟合，包括Zero-order、First-order、Higuchi、Korsmeyer-Peppas和Weibull模型^[23]，分别如式（4）~（8）所示。

（4）$Zero-order Q=a\times t+b$

（5）$First-order Q=1-{e}^{-{k}_{1}t}$

（6）$Higuchi Q={k}_{2}\times \sqrt{t}+b$

（7）$Korsmeyer-Peppas Q={k}_{3}\times {t}^{n}$

（8）$Weibull Q=100{1-{e}^{-[k（t-{t}_{c}）{]}^{d}}}$

式中，Q为t时累积释放百分率，%；k、n为系数，释放指数n是表征释放机制的特征参数；t为释放时间，h。

1.2.5 载体安全性及载药颗粒抗癌活性

采用CCK8法评价MPPR安全性及载药颗粒MPPR-PUE抗癌活性。取对数生长期的LX-2和LM3细胞，以5×10³个/孔接种于96孔板，培养24 h后分组处理：空白组（单纯培养液）、对照组（含细胞）、纳米载体实验组（浓度100、50、25、12.5、0 μg/mL）、载药颗粒MPPR-PUE实验组（浓度100、50、25、12.5、0 μg/mL）、PUE药物组（浓度100、50、25、12.5、0 μg/mL），每组设6个复孔。给药48 h后弃去培养液，加入CCK8试剂孵育4 h，酶标仪测定450 nm处吸光值（OD），计算细胞相对增殖率（RGR），如式（9）所示。

（9）$\begin{array}{l}RGR（\%）=[（实验组OD均值-空白组OD均值）/\\ （对照组OD值-空白组OD值）]\times 100\%\end{array}$

1.2.6 细胞迁移

取对数生长期LM3细胞，消化计数后按5×10⁵个/孔接种于6孔板，加2 mL完全培养基，培养24 h至细胞铺满。将6孔板分为4组：正常组（只含培养基）、PUE组、MPPR组、MPPR-PUE组。用无菌枪头垂直划线，PBS清洗后，各组分别加入含对应药物（PUE、MPPR、MPPR-PUE）的培养基，0 h拍照记录。继续置于培养箱培养24 h后再次拍照，使用Image J软件计算细胞迁移率，对比分析不同处理对细胞迁移能力的影响。

2 结果与讨论

2.1 样品的形貌表征

MoS₂、MPP和MPPR的SEM和TEM图如图2和图3所示。从图2（a）MoS₂的电镜图看到，其表面光滑，呈现较为平整、规则的片状结构；图2（b）MPP的电镜图出现褶皱和卷曲，边缘不平滑，这是由于PEI和PF68修饰后，改变了MoS₂表面的形态，使MoS₂片层发生弯曲和变形。图2（c）MPPR的电镜图同样存在褶皱和卷曲现象，且褶皱和卷曲程度比较明显，这是因为RGD肽的引入进一步影响了材料的微观结构。图3（a）显示MoS₂是具有二维片层状结构，呈现出片层堆叠状态。图3（d）表明MoS₂的结晶性良好，层间距为0.640 8 nm。图3（b）、（c）可以看到MoS₂表面经过PEI、PF68和RGD的修饰，表面变得更加均匀，分散性提高，MoS₂仍体现出很薄的片层结构。图3（e）、（f）显示，经过修饰后，层间距有所增大，为后续反应提供了条件。

2.2 样品的结构分析

使用傅里叶变换红外光谱仪对MoS₂和经过修饰的MoS₂纳米载体进行全波谱扫描，得到红外光谱见图4所示，曲线1为MoS₂，曲线2是聚乙烯亚胺（PEI）和普朗尼克PF68修饰后的MoS₂（MPP），曲线3是聚乙烯亚胺（PEI）、普朗尼克PF68、RGD肽修饰后的MoS₂（MPPR）。对于曲线2，2 944.79 cm^-1处的吸收峰，归属于聚乙烯亚胺（PEI）和普朗尼克PF68上亚甲基的C—H键振动；在1 650.78 cm^-1处的峰，可能对应PEI中N—H的弯曲振动；在 1 409.72 cm^-1处的吸收峰，源于PF68中的—CH₂和C—O—C结构振动。这些特征峰的出现，表明PEI和PF68已成功引入到MoS₂表面。对于曲线3，除了曲线2中的特征峰外，在1 706.64 cm^-1处的吸收峰为RGD肽中羧酸基团（—COOH）的C=O键，在1 650.78 cm^-1处的吸收峰归属可能是RGD肽的酰胺Ⅰ带（C=O伸缩和N—H弯曲耦合）和PEI中N—H弯曲振动，在1 552.51 cm^-1处的吸收峰归属为RGD肽的酰胺Ⅱ带N—H弯曲和C—N伸缩峰和PEI中N—H弯曲振动，各特征结构的出现表明PEI、PF68和RGD肽成功修饰在MoS₂的表面上。

利用X射线光电子能谱（XPS）对二硫化钼以及修饰后的二硫化钼的元素组成进行分析。从图5的全谱中可清晰观察到Mo元素和S元素的特征峰。对Mo、S元素进行高分辨扫描，如图6、图7所示。在Mo 3d轨道高分辨扫描谱中，在232.0 eV和228.8 eV附近的2个峰，分别对应Mo 3d_5/2轨道和Mo 3d_3/2轨道。在S 2p轨道高分辨扫描谱中，162.42 eV和161.04 eV附近的2个峰，分别对应 S 2p_3/2轨道和S 2p_1/2轨道。对峰面积积分，确定元素百分比，钼为17.04%，硫为29.84%，钼与硫比值为0.57，接近理论值0.5，表明水热反应产物为二硫化钼。

通过对二硫化钼以及修饰后的二硫化钼的N元素进行分峰拟合分析，如图7所示，MoS₂的N 1s谱中无明显峰，经PEI、PF68修饰后的二硫化钼的 N 1s谱出现特征峰，再经过RGD钼的N 1s谱存在多个不同化学态的N，这证明二硫化钼表面功能化修饰成功。

2.3 载药与释药性能测试

Puerarin（PUE）的紫外-可见吸收光谱如图8（a）所示，PUE在波长为250 nm处的吸收峰比较特殊而且比较平缓，选择波长为250 nm进行定量分析，分别测不同浓度PUE标准溶液在特征波长处的吸光值，然后绘制标准曲线。标准曲线见图8（b）所示，PUE的线性回归方程如式（10）所示。

（10）$A=0.008 5C+0.166 3（{R}^{2}=0.999 7）$

其中，A为PUE在250 nm处紫外-可见吸光度值，C为PUE的浓度（μg/mL），相关系数R²=0.999 7，表明PUE浓度在0~80 μg/mL范围内，具有较好的线性关系，该标准曲线可信。

对药物载体MPPR进行载药和体外释药性能的考察结果如图9所示。图9（a）是载药性能考察结果，随着药物PUE投入量的增加，载药量逐渐增加，当投入药物为5 mg时，载药量达到46.91%±3.27%，包封率达到82.52%±0.82%。利用肝癌细胞内的弱酸性特点，根据药典配制pH为5.50、7.40的PBS磷酸缓冲溶液进行释药实验，结果见图9（b）所示。载药体系具有pH响应，在pH为7.40的PBS磷酸缓冲溶液中，24 h后药物的释放率是39.30%±3.06%，在pH为5.50的PBS溶液中，24 h后药物的释放率可以达到61.60%±5.01%，具有较好的药物释放性能。将载药体系中的药物释放情况进行动力学模型拟合，可以在一定程度上反映药物的释放机理。因此，使用Origin 2022软件对本实验中的体外释放数据进行Zero-order、First-order、Higuchi、Korsmeyer-Peppas和Weibull模型拟合，根据拟合优度（R²）来判定曲线拟合情况，动力学分析结果见表1。在pH为7.40时，First-order模型拟合最佳，释放以浓度差驱动的一级动力学为主，K-P模型n值（0.267 1）支持扩散作用。而在pH为5.50，Weibull模型拟合最优（R²=0.924 5），K-P模型n值（0.346 1）表明扩散为主要驱动力，同时可能存在少量骨架溶蚀，释放过程符合Weibull分布特征。pH响应可通过改变载体溶蚀、药物溶解/解离，调控释放机制，让药物在肿瘤微环境精准释药，提升疗效、降低副作用。

2.4 载体安全性及载药颗粒抗癌活性

通过检测不同浓度（0、12.5、25、50、100 μg/mL）的MPPR对LX2和LM3细胞相对生长率（RGR）的影响，评估其细胞毒性：如图10（a）所示，低浓度时，两种细胞RGR均维持较高水平；中浓度下，LX2生长稳定，LM3的RGR小幅下降；高浓度时，LX2的RGR变化不大，LM3的RGR降低，表现出对LM3的选择性抑制。在0~100 μg/mL范围内，细胞相对增殖率均>75%，表明MPPR细胞毒性低、生物安全性良好。图10（b）载药颗粒抗癌活性实验显示，0~100 μg/mL浓度下，PUE组增殖率从100%降至50.12%，MPPR-PUE组从100%降至32.47%，这证实PUE及MPPR-PUE均可抑制癌细胞增殖，且MPPR-PUE的抑制效果更显著。

2.5 细胞迁移

在LM3细胞划痕实验中，通过图11（a）划痕图像及图11（b）细胞迁移率数据分析可知：MPPR-PUE组细胞迁移率最低（平均约5.03%），24 h后划痕愈合最少，对LM3细胞迁移抑制最强；PUE组迁移率（平均约15.13%）显著低于正常组与MPPR组，结果表明PUE也能抑制癌细胞的迁移；MPPR组迁移率（平均约32.03%）接近正常组（平均33.14%），对癌细胞的迁移抑制作用弱。因此，MPPR-PUE组显著抑制LM3细胞迁移，效果优于PUE组。

3 结论

本项目基于二硫化钼，对其进行功能化修饰后，制备得到了药物载体（MPPR），并对其进行了结构和形貌表征以及体外载药与释药性能、安全性评价研究。药物载体（MPPR）结合葛根素PUE，具有较好的载药性能，载药量达到46.91%±3.27%，包封率达到82.52%±0.82%。体外释药实验表明载药体系具有pH响应，在pH为5.50的PBS溶液中，24 h后药物的释放率可以达到61.60%±5.01%，具有较好的药物释放性能。CCK8法测定药物载体 MPPR和载药颗粒MPPR-PUE对细胞增殖的影响，在载体浓度0~100.00 μg/mL范围内，MPPR细胞毒性小；MPPR-PUE对肝癌细胞增殖抑制效果最好，并通过细胞划痕实验，得到MPPR-PUE对肝癌细胞具有抑制迁移的作用。本研究所构建的纳米载体在药物递送系统中具有一定的应用前景。

参考文献

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