现代化工

现代化工 ›› 2026, Vol. 46 ›› Issue (3) : 117-122. DOI: 10.16606/j.cnki.issn0253-4320.2026.03.020

科研与开发

高山火绒草不同极性提取物的抗氧化活性及其多酚稳定性研究

张洁如 ¹ ,
彭效明 ¹^,^* ,
付伟凭 ² ,
居瑞军 ¹ ,
杨思敏 ¹ ,
严晓强 ¹ ,
管洁 ¹ ,
沈佳辰 ¹

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Antioxidant activity and polyphenol stability of different polarity solvent extracts of leontopodium alpinum

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摘要

系统评估了不同极性溶剂(包括纯水、乙醇梯度溶液和乙酸乙酯)对高山火绒草多酚的提取效率、抗氧化活性,首次对体积分数为60%乙醇提取物进行系统稳定性分析。结果表明,60%的乙醇提取的多酚质量分数最高(50.67 mg/g),在2,2-二苯基-1-苦苯肼(DPPH)、2,2'-偶氮二(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)(ABTS)自由基清除以及总还原力实验中表现最佳,证实抗氧化活性与多酚含量显著相关。稳定性实验显示,Na⁺、Fe³⁺、亚硫酸钠及柠檬酸钠显著降低多酚的稳定性,在pH为8和低温(20~60℃)条件下多酚稳定性较好。

Abstract

This study systematically evaluated the extraction efficiency and antioxidant activity of polyphenols from Leontopodium alpinum using solvents of different polarities (pure water,ethanol gradients,and ethyl acetate).A systematic stability analysis of the 60% ethanol extract was conducted for the first time.Results indicated that the 60% ethanol extract had the highest polyphenol content (50.67 mg/g) and the best performance in DPPH and ABTS radical scavenging assays and total reducing power test.A significant correlation between antioxidant activity and polyphenol content was confirmed.Stability experiments showed that Na⁺,Fe³⁺,sodium sulfite,and sodium citrate significantly reduced polyphenol stability,while polyphenols were more stable at pH 8 and low temperatures (20-60℃).

Graphical abstract

关键词

高山火绒草 / 稳定性研究 / 抗氧化活性 / 提取工艺 / 极性部位

Key words

leontopodium alpinum / stability study / antioxidant activity / extraction process / polar fractions

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张洁如,彭效明,付伟凭,居瑞军,杨思敏,严晓强,管洁,沈佳辰. 高山火绒草不同极性提取物的抗氧化活性及其多酚稳定性研究[J]. , 2026, 46(3): 117-122 DOI:10.16606/j.cnki.issn0253-4320.2026.03.020

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高山火绒草(Leontopodium alpinum),亦称雪绒花或高山薄雪草,系菊科火绒草属的多年生草本高山植物,为我国一种民间药用植物。其味微苦、性寒,入肾、膀胱二经,具有疏风清热、利尿、止血之功效,临床常用于治疗风热表证、血热妄行及淋证水肿^[1-3]。

现有研究表明,火绒草属植物化学成分丰富,已鉴定出黄酮类、苯丙素类、甾体化合物、酚酸及萜类等活性物质^[4]。药理学研究证实其具有多重作用:(1)调节免疫功能,治疗流行性感冒等外感疾病;(2)改善肾脏微循环,缓解急(慢)性肾炎、蛋白尿及血尿^[3];(3)调控糖代谢,辅助糖尿病治疗^[5];(4)编码调控基因,参与发育过程、程序性细胞死亡并对角质化和角化形成皮肤屏障的正调控,抑制活性氧,广泛用于抗衰老护肤品开发^[6-7]。最新揭示其在已知毛囊细胞凋亡(防脱发)^[8]和肿瘤预防^[9]中的潜力。

尽管火绒草属植物的化学成分研究表明其在抗氧化中的作用^[4-7]及已有多酚抗氧化活性的检测报道^[8-10],但其多酚类成分的不同极性溶剂提取效率、抗氧化活性与多酚含量的定量关联性,以及多酚稳定性的系统研究仍存在空白。本研究系统筛选纯水、20%~95%梯度乙醇及乙酸乙酯等不同极性溶剂,测定各提取物的提取量与多酚含量;通过2,2-二苯基-1-苦苯肼(DPPH)、2,2'-偶氮二(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)(ABTS)、总还原力等体外抗氧化实验,评估各提取物的抗氧化性能,并与多酚含量做相关性分析;探讨金属离子、pH、还原剂等对60%乙醇提取物中多酚稳定性的影响,从实验设计到结果分析形成完整的稳定性评价体系,为医药与化妆品开发提供理论支持^[11-12]。

1 仪器与试剂

1.1 仪器与设备

SQP电子天平(量程1~60 000 mg,赛多利斯科学仪器有限公司,北京);600Y多功能粉碎机(永康市铂欧五金制品有限公司);KQ-500E型超声清洗器(超声频率40 kHz,超声功率500 W,昆山市超声仪器有限公司);旋转蒸发器(郑州长城科工贸有限公司);SCIENTZ-50F冷冻干燥机(宁波新芝生物科技股份有限公司);酶标仪(北京科瑞恩特科技有限公司);DK-98-ⅡA电热恒温水浴锅(天津市泰斯仪器有限公司);pH计(北京赛多利斯科学仪器有限公司)。

1.2 材料与试剂

高山火绒草(产地广西);乙醇、抗坏血酸(国药集团化学试剂有限公司);乙酸乙酯、无水乙醇、亚硫酸钠(天津福晨化学试剂有限公司);没食子酸、ABTS(大连美仑生物技术有限公司);福林酚(上海吉至生化科技有限公司);无水碳酸钠、柠檬酸钠(天津市光复科技发展有限公司);1,1-二苯基-2-苦基肼(上海梯希爱化成工业发展有限公司);甲醇(北京百灵威科技有限公司);磷酸缓冲液(北京中生奥邦生物科技有限公司);蔗糖(天津市众联化学试剂有限公司);氯化钙、氯化钠(北京现代东方精细化学品有限公司);氢氧化钠(北京化工厂有限责任公司)。

2 实验方法

2.1 高山火绒草样品制备与前处理

高山火绒草干燥药材1 kg,粉碎并过80目筛。取50 g高山火绒草粉末,分别以10倍体积的纯水、体积分数20%、40%、60%、80%、95%的乙醇和乙酸乙酯为溶剂依次进行提取^[12]。每种溶剂超声提取 3 h后,静置12 h旋蒸浓缩,冷冻干燥后,得到高山火绒草不同极性溶剂提取物。

2.2 高山火绒草多酚含量测定

根据Folin-Ciocalteu法配制不同质量浓度的没食子酸工作溶液。取100 μL工作溶液和250 μL福林酚试剂混匀,反应5 min后加入250 μL 15% Na₂CO₃溶液,定容至1 mL。放入40℃水浴锅中保温60 min,室温静置20 min后,在778 nm处测定吸光度^[13-15]。绘制标准曲线。

将高山火绒草提取物溶液配制为2 mg/mL,取100 μL样品溶液按照Folin-Ciocalteu法测定吸光度,根据标准曲线计算高山火绒草不同溶剂提取物中多酚质量分数^[16]。

2.3 高山火绒草不同极性提取物体外抗氧化活性检测

2.3.1 DPPH自由基清除活性检测

配制1 mmol/L DPPH储备液,使用不同浓度的高山火绒草提取物溶液(2 mg/mL稀释至0.062 5 mg/mL)和抗坏血酸溶液(Vc,2 mg/mL稀释至0.062 5 mg/mL),加入0.6 mL DPPH储液,避光放置反应30 min,以5 000 r/min转速离心2 min后,在517 nm处测定吸光值^[17-18]。DPPH的清除率根据式(1)求得。

(1)

$\begin{array}{l}DPPH清除率\%=\\ [1-({A}_{样品}-{A}_{对照})/{A}_{空白}]\times 100\%\end{array}$

2.3.2 ABTS自由基清除活性检测

配制ABTS工作液,取10 μL不同浓度高山火绒草提取物样品溶液与200 μL ABTS工作液混合,反应后在734 nm处测定吸光值^[19-20]。按照式(1)计算清除率。

2.3.3 总还原力检测

配制不同质量浓度的样品溶液于容量瓶中,加入磷酸缓冲溶液和铁氰化钾溶液,置于50℃恒温水浴中保温20 min,冷却后加入三氯乙酸溶液,取上清液,加入无水乙醇和三氯化铁,混匀后在700 nm处测吸光值^[21-22]。

2.4 高山火绒草多酚稳定性研究

2.4.1 金属离子对高山火绒草多酚稳定性的影响

质量浓度0.02、0.04、0.06、0.08、0.10 mg/mL的NaCl、CaCl₂、FeCl₃等金属离子溶液与高山火绒草60%乙醇提取物溶液等体积混合,避光静置30 min后,按照2.2检测方法测定。高山火绒草多酚保留率根据式(2)求得。

多酚保留率=(处理后的样品多酚质量分数/

(2)未经处理的样品多酚质量分数)×100

2.4.2 pH对高山火绒草多酚稳定性的影响

配制一定质量浓度的高山火绒草60%乙醇提取物溶液,加入使用氯化氢溶液(HCl)或氢氧化钠溶液(NaOH)调节pH为2、4、6、8、10、12的溶液,室温下静置30 min后,按照2.2检测方法测定高山火绒草多酚保留率^[23]。

2.4.3 还原物对高山火绒草多酚稳定性的影响

不同质量浓度(0.00、0.02、0.04、0.06、0.08、0.10 mg/mL)的Na₂SO₃溶液与高山火绒草60%乙醇提取物溶液等体积混合,静置30 min后,按照2.2检测方法测定。按照式(2)计算高山火绒草多酚保留率^[16]。

2.4.4 食品添加剂对高山火绒草多酚稳定性的影响

分别将质量分数0、0.01%、0.02%、0.03%、0.04%、0.05%柠檬酸钠溶液和蔗糖溶液加入到高山火绒草60%乙醇提取物溶液中,静置6 h后,按照2.2检测方法测定。按照式(2)计算高山火绒草多酚保留率。

2.4.5 温度对高山火绒草多酚稳定性的影响

将相同体积的高山火绒草60%乙醇提取物溶液分别放在20、40、60、80、95℃水浴锅中1~8 h^[24],定时取样按照2.2检测方法测定。按照式(2)计算高山火绒草多酚保留率。

2.5 数据处理与统计方法

使用Excel和Graphpad Prism 8进行数据统计处理、抗氧化活性评估和相关性分析,用Origin 2018绘图直观展示数据趋势。

3 结果与分析

3.1 极性溶剂对高山火绒草提取率的影响

表1展示了不同极性溶剂对高山火绒草进行提取的结果。

表1中数据可知,随着乙醇浓度的升高,提取率呈现出先升后降的趋势。其中,体积分数20%和40%乙醇对高山火绒草成分的提取效果最优,提取率分别为6.27%和6.12%。相比之下,高浓度乙醇(80%、95%)以及非极性溶剂乙酸乙酯的提取效率明显降低。这一结果可能与不同溶剂的极性及其对目标成分的溶解能力有关。低浓度乙醇具有较强的极性,能够有效提取水溶液及部分中等极性的成分;而高浓度乙醇和乙酸乙酯极性较低,不利于极性活性成分的溶出,因而导致提取率下降^[25]。此外,极性匹配原则也表明,目标成分的极性与溶剂极性越接近,提取率越高,这也在本实验中得到了验证。综上,20%~40%乙醇是提取高山火绒草活性成分较为适宜的溶剂选择。

3.2 溶剂提取物中多酚的质量分数

通过2.2实验数据计算得到标准曲线以及线性回归方程如式(3)所示。

(3)y=0.007 2x+0.013 5

相关系数R²=0.998 8,表明标准曲线拟合效果良好。根据线性回归方程测得了不同极性部位的多酚质量分数(图1)。从结果来看,体积分数60%的乙醇提取物中多酚的质量分数最高(50.67 mg/g),而体积分数95%乙醇提取物中多酚的质量分数最低(25.51 mg/g)。这表明,在一定范围内,乙醇浓度的提高有利于多酚的提取,但过高的乙醇浓度会导致提取效率降低。

3.3 高山火绒草不同极性提取物体外抗氧化活性结果

3.3.1 高山火绒草不同极性提取物清除DPPH活性结果

图2展示了高山火绒草不同溶剂提取物对 DPPH清除率的影响。

从图2可以看出,高山火绒草不同提取物的DPPH自由基清除能力按如下顺序排列:体积分数60%乙醇>体积分数40%乙醇>体积分数80%乙醇>体积分数20%乙醇>纯水>体积分数95%乙醇>乙酸乙酯。

体积分数60%的乙醇提取物在清除DPPH自由基活性测试中表现最佳。在0.062 5~2 mg/mL质量浓度范围内,体积分数60%乙醇的DPPH自由基清除率从3.80%提高至93.74%。

3.3.2 高山火绒草不同极性提取物清除ABTS活性结果

图3展示了高山火绒草不同溶剂提取物对ABTS清除率的影响。

通过图3可以看出,维生素C是一种理想的阳性对照物,高山火绒草不同溶剂提取物均具有ABTS自由基清除能力。体积分数60%乙醇提取物在 2 mg/mL的质量浓度下展现出了最强的清除能力,清除率达55.43%。总体来看,ABTS自由基清除能力随溶剂极性差异表现出显著的变化,清除能力的排序如下:体积分数60%乙醇>体积分数40%乙醇>体积分数80%乙醇>纯水>体积分数20%乙醇>体积分数95%乙醇>乙酸乙酯。

3.3.3 高山火绒草不同极性提取物总还原力

图4展示了高山火绒草不同溶剂提取物对总还原力的影响。

在该测定体系中,根据Beer-Lambert定律吸光度与溶液质量浓度呈正相关关系,从图4可以看出,各溶剂提取物的总还原力随着质量浓度的增加而增强。这表明不同极性溶剂提取物均具有一定的还原能力。在各样品中,60%乙醇提取物和40%乙醇提取物表现出较强的总还原能力,60%乙醇提取物的吸光度在2 mg/mL的质量浓度下达到最大值。总体上,不同溶剂提取物的还原能力由强到弱的排序为:体积分数60%乙醇>体积分数40%乙醇>体积分数80%乙醇>体积分数20%乙醇>体积分数95%乙醇>纯水>乙酸乙酯。

3.3.4 高山火绒草抗氧化活性的IC₅₀值分析

通过GraphPad Prism 8软件对高山火绒草不同溶剂提取物的抗氧化活性进行评估,得各提取物的IC₅₀值。IC₅₀值越小提取物抗氧化活性越强^[26-28]。总还原力的抗氧化性通过相对总还原率进行表征。高山火绒草不同溶剂提取物的IC₅₀值如表2所示。

从表2中可以看出,体积分数60%乙醇在所有抗氧化活性评估中表现出最低的IC₅₀值,表明其具有最强的抗氧化能力。这一结果表明,60%乙醇不仅高效地提取了高山火绒草中的多酚类化合物,还展现出了其显著的抗氧化性能。相比之下,乙酸乙酯提取物在DPPH、ABTS两项抗氧化评估中的IC₅₀值较高,分别达到13.85 mg/mL和14.87 mg/mL,表明其抗氧化活性较弱。选择60%乙醇提取物作为后续多酚的稳定性研究样品。

3.3.5 高山火绒草不同极性部位中多酚质量分数与抗氧化活性的相关性分析

表3展示了高山火绒草不同溶剂提取物多酚质量分数与抗氧化活性的相关性。通过相关性分析,可以看出高山火绒草多酚的质量分数与抗氧化活性之间存在显著的正相关性^[29]。

从表3中可以看出,高山火绒草不同极性部位多酚质量分数与DPPH、ABTS自由基清除率的相关性系数分别为0.930、0.893,且均在0.01显著性水平下具有高度相关性。此外,多酚质量分数与清除总还原力的相关系数为0.765,在0.05级别的显著水平上也表现出正相关性。这些结果表明,多酚在高山火绒草抗氧化活性中起着核心作用,为其在护肤品和医药领域的应用提供了理论依据。

3.4 高山火绒草多酚的稳定性分析

3.4.1 金属离子对高山火绒草稳定性的影响

表4展示了金属离子对高山火绒草稳定性的影响。通过分析不同质量浓度金属离子(Na⁺、Fe³⁺、Ca²⁺)的多酚保留率,可以看出金属离子对高山火绒草多酚保留率的影响顺序为:Na⁺>Fe³⁺>Ca²⁺。在质量浓度为0.03~0.05 mg/mL时,Na⁺、Fe³⁺对高山火绒草多酚保留率的影响增大,导致多酚保留率显著下降。Na⁺、Fe³⁺对多酚稳定性的显著破坏可能与金属螯合作用^[30]和氧化催化作用有关。为确保高山火绒草多酚的稳定性,处理高山火绒草的各环节都应避免与Na⁺、Fe³⁺接触。

3.4.2 pH对高山火绒草稳定性的影响

表5展示了pH对高山火绒草稳定性的影响。从表中可以看出,高山火绒草多酚的保留率随着pH的变化呈现先增加后减少的趋势。当pH为8时,多酚保留率最高,达到98.64%。然而,当pH<6或者pH>10时,多酚保留率不稳定,且在pH为12时,保留率降至最低,为80.64%。

根据表5中的数据,高山火绒草多酚在pH为8的环境中最为稳定,因此,在高山火绒草的应用过程中,维持pH在8附近有助于保持其多酚成分的稳定性。

3.4.3 还原物对高山火绒草稳定性的影响

表6展示了还原物对高山火绒草稳定性的影响。通过分析添加不同质量浓度亚硫酸钠的多酚保留率,可以看出,随着Na₂SO₃浓度的增加,高山火绒草多酚的保留率逐渐降低。这表明,Na₂SO₃可能通过破坏多酚的结构,导致其稳定性降低。

根据表6的数据,随着Na₂SO₃的质量浓度增加多酚保留率呈递减趋势,因此为了保持高山火绒草多酚成分的稳定性,在高山火绒草的生产、储存和运输过程中,应避免其与还原剂接触。

3.4.4 食品添加剂对高山火绒草稳定性的影响

表7展示了食品添加剂对高山火绒草稳定性的影响。根据表中的数据,柠檬酸钠和蔗糖质量浓度变化对高山火绒草多酚保留率具有不同影响。

从表7可以看出,柠檬酸钠质量浓度的升高,导致多酚的保留率持续下降至95.54%。与此同时,蔗糖对高山火绒草多酚的保留率几乎没有影响^[31]。这些结果表明,柠檬酸钠可能在较高浓度下影响高山火绒草多酚的稳定性,而蔗糖对其稳定性影响较小。

3.4.5 温度对高山火绒草稳定性的影响

表8展示了不同温度对高山火绒草多酚的稳定性。根据数据分析,温度对多酚的保留率具有显著影响,且随着时间的推移,释放和降解的趋势有所不同。

由表8可知,在温度20~60℃条件下,2 h时,多酚含量逐渐增加,分别增长了(5.12%、4.61%、4.01%),4~8 h保留率变化不大。这表明温度适中时,多酚的释放需要一定的时间。温度为80℃时,尽管高温加速了多酚的释放,但随后时间的延长导致多酚逐步降解,致使多酚含量降低。温度为95℃时,多酚的降解作用更加明显,8 h后多酚保留率降至84.99%。这些结果表明,高温(尤其是95℃)对多酚的稳定性产生了显著的破坏作用,因此在高山火绒草的加工和存储过程中,温度的控制至关重要。

4 结论

本研究系统评估了高山火绒草不同极性溶剂提取物的多酚含量、抗氧化活性及稳定性。综合高山火绒草不同极性溶剂提取率和多酚质量浓度的分析,60%乙醇为高山火绒草多酚提取的最优溶剂,可获得50.67 mg/g的多酚含量,并表现出最佳的 DPPH、ABTS清除与总还原力活性(IC₅₀分别为0.84、1.41、0.51 mg/mL),建议在试剂应用中优先考虑60%乙醇溶液作为高山火绒草多酚的提取溶剂。不同极性部位的多酚含量测定实验结果显示体积分数60%乙醇的质量浓度最高,为50.67 mg/g,体积分数95%乙醇的多酚质量浓度最低,为25.51 mg/g,说明不同极性溶剂对高山火绒草多酚的提取具有显著的差异。纯水、不同浓度的乙醇溶液以及乙酸乙酯提取物均有较好的抗氧化能力,随着样品的质量浓度增高,抗氧化活性增强。体积分数60%乙醇的体外抗氧化活性最强,证明了多酚质量浓度与抗氧化活性之间的正相关性。高山火绒草稳定性研究结果表明,在生产、储存和运输过程应避免与Na⁺、Fe³⁺、Na₂SO₃和柠檬酸钠接触,可以在pH=8、20~60℃的环境中保存。本研究为后续高山火绒草在医药与化妆品领域的配方设计、质量控制提供了重要参考。

参考文献

原文顺序 | 出版日期 | 本文引用

[1]	刘轩. 火绒草生药学研究[D]. 沈阳: 辽宁中医药大学, 2009.

[2]	张新刚, 李婷, 任新蕊, 等. 火绒草属药学研究新进展[J]. 安徽农业科学, 2011, 39(31):19093-19094,19121.

[3]	展锐. 火绒草有效成分和抗氧化作用的研究[D]. 乌鲁木齐: 新疆大学, 2010.

[4]	高景莘, 向海燕, 李瑞, 等. 火绒草属植物化学成分及药理作用研究进展[J]. 西南民族大学学报(自然科学版), 2024, 50(1):61-74.

[5]	徐珊, 赵明琦, 李增强, 等. 火绒草对大鼠系膜增生性肾小球肾炎的影响[J]. 中药药理与临床, 2013, 29(4):108-111.

[6]	Cho W K, Kim H I, Kim S Y, et al. Anti-aging effects of Leontopodium alpinum(Edelweiss) callus culture extract through transcriptome profiling[J]. Genes (Basel), 2020, 11(2):230.

[7]	Li H, Meng X, Zhang Y, et al. Active components of Leontopodium alpinum callus culture extract for blue light damage in human foreskin fibroblasts[J]. Molecules, 2023, 28(21):7319.

[8]	Campiche R, Le Riche A, Edelkamp J, et al. An extract of Leontopodium alpinum inhibits catagen development ex vivo and increases hair density in vivo[J]. International Journal of Cosmetic Science, 2022, 44(3):363-376.

[9]	Pralea I E, Moldovan R C, Ţigu A B, et al. Profiling of polyphenolic compounds of Leontopodium alpinum callus cultures using UPLC/IM-HRMS and screening of in vitro effects[J]. Plants (Basel), 2021, 11(1):100.

[10]	雷菲菲, 杨洁, 陶汝俊, 等. 火绒草属植物化学成分的发现及药理活性研究[J]. 药物资讯, 2018, 7(5):102-115.

[11]	秦小桐, 曹昱莹, 居瑞军, 等. 虎杖根不同溶剂提取物的抗氧化活性研究[J]. 现代化工, 2024, 44(4):128-133.

[12]	赵苏苏, 高佳, 吕冰, 等. 黑曲霉发酵麸皮产总阿魏酸工艺优化及其抑菌活性初探[J]. 中国粮油学报, 2023, 38(12):167-175.

[13]	周立稳, 彭效明, 居瑞军, 等. 不同溶剂对枇杷果提取物抗氧化活性和多酚稳定性的影响[J]. 食品与生物技术学报, 2024, 43(9):107-115.

[14]	卢千山, 童舟, 赵海英, 等. 紫馚生菜多酚的抗氧化、抑菌活性与稳定性研究[J]. 中国食品添加剂, 2024, 35(5):150-159.

[15]	秦靖欣, 杨志伟. 杨桃多酚的提取工艺优化及其抗氧化活性评价[J/OL]. 食品工业科技,1-18[2025-04-10].

[16]	关富强, 彭效明, 居瑞军, 等. 积雪草不同溶剂提取物的抗氧化活性及其稳定性研究[J]. 现代化工, 2025, 45(3):100-105.

[17]	赵欢, 田玉凤, 杨兰兰, 等. 荔枝核提取物的化学成分及其抗炎活性[J/OL]. 现代食品科技,1-13[2025-03-26].

[18]	唐雅园, 王雪峰, 韦珍, 等. 香蕉花多糖抗氧化活性及稳定性研究[J]. 食品工业科技, 2024, 45(7):100-107.

[19]	任平国, 徐启红, 党卫红, 等. 刺梨酵素发酵工艺优化及其抗氧化活性研究[J]. 中国酿造, 2025, 44(2):239-244.

[20]	王馨, 吴孟仙, 陈媛媛, 等. 杜仲叶固态混菌发酵工艺优化及其体外活性研究[J]. 中国食品添加剂, 2025, 36(3):29-37.

[21]	徐璐瑶, 赵洋, 王艳, 等. 超声辅助低共熔溶剂提取玫瑰茄黄酮工艺优化及其抗氧化活性分析[J/OL]. 食品工业科技,1-19[2025-03-26].

[22]	卢跃红, 王斌, 刘偲, 等. 沙葱多酚提取物抗氧化活性及其对消化酶的抑制作用[J]. 中国食品学报, 2024, 24(8):164-177.

[23]	于莎莎, 谢辉, 辛甜, 等. 鹧鸪茶多酚纯化物的稳定性及生物活性研究[J]. 食品科技, 2023, 48(10):173-179.

[24]	干建松. 荸荠皮多酚的纯化与抗氧化性、稳定性研究[J]. 食品研究与开发, 2022, 43(17):27-33.

[25]	沈玺龙, 官纪元, 陈哲, 等. 树莓果实多酚的提取及抗氧化活性研究[J]. 山东化工, 2024, 53(22):11-13.

[26]	Park S K, Lee Y K. Antioxidant activity in rheum emodi wall (Himalayan Rhubarb)[J]. Molecules, 2021, 26(9):2555.

[27]	Liu Y C, Sui N, Wang J Q, et al. A novel flavonoid with antioxidant activity from patrinia villosa (Thunb.) Juss[J]. Natural Product Research, 2022, 36(12):2977-2983.

[28]	Belabdelili F, Bekhti N, Piras A, et al. Chemical composition,antioxidant and antibacterial activity of crataegus monogyna leaves’ extracts[J]. Natural Product Research, 2022, 36(12):3234-3239.

[29]	肖欣, 龙富, 李志荣, 等. LC-MS/MS法同时测定不同产地木瓜中14种酚类成分含量及其抗氧化活性分析[J/OL]. 现代食品科技,1-10[2025-04-10].

[30]	朱玉章, 林坤, 吴金城, 等. 亨氏马尾藻多酚提取工艺优化及稳定性研究[J]. 中国食品添加剂, 2024, 35(4):12-22.

[31]	葛亮, 李琦, 李森, 等. 沙棘果总多酚提取工艺的优化及其稳定性研究[J]. 化学与生物工程, 2023, 40(3):30-35.

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Received	Accepted	Published
2025-06-03
Issue Date
2026-03-27

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